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Title

Ensayos de reproducción vegetativa de híbridos de castaño Castanea sativa x Castanea crenata

AuthorsViéitez Cortizo, Ernesto
KeywordsCastanea sativa
Castanea crenata
Vegetative propagation
Reproducción vegetativa
Soft cuttings
Hard cuttings
Estacas duras
Estacas foliosas
Issue Date1952
PublisherConsejo Superior de Investigaciones Científicas (España)
CitationAnales de edafología y fisiología Vegetal 11 (2): 185-210 (1952)
Abstract[EN] In order to get vegetative propagation of chestnut´s hybrids (Castanea sativa x Castanea crenata) fungus disease resistant experiments using both hard and soft cuttings were carried out. For hard cuttings the followings tests were set up: 1.- Cuttings treated for 24 hours under red light at 17-2OºC, with β-indolylacetic acid, α-naphthalencacetic acid, indolylpropionic acid, 2,4,5-trichlorophenoxyacetic acid and the sodium salt of α-naphthalencacetic acid at concentrations of 200, 125, 80, 40 and 20 ppm for each root-forming substance. 2.-Cuttings treated for 15 hours with a solution of copper sulfate, zinc sulfate, manganese sulfate, cobalt chloride and boric acid (each O,0Ol%0) with the addition 80, 40 or 2O ppm α-naphthalencacetic acid under same conditions as so (1). 3.- Cuttings treated at OºC. for 27 days followed by treatment with 5O ppm β-indolylacetic acid or a proprietary dust containing α-naphthalencacetic acid. For 1eafy cuttings, the followings tests were set up: 1.-Cuttings taken before mother-plant had flowered, treated with 100 and 50 ppm heteroauxin, α-naphthalencacetic acid or with a proprietary dust. Solution applied in dark a 19ºC. 2.-Cuttings, taken when mother-plant was at the early stages of fruit development, treated with 3.000 ppm α-naphthalencacetic acid for 1 minute and then rinsed in tap water or treated with two different proprietary dust. 3.-Cuttings taken from mother-plant with well developed fruit. Tests were made using a daily spraying ,with a Knop's modified solution, with 50 mgs. asparagine, 50 mgs. D l-α alanine, 2,5 g zinc sulfate and 8O g sucrose added to each liter. All cuttings were treated with a proprietary dust. With both the hard and soft cuttings, care was taken in the selection of most suitable material and in the handling. The time elapsing between cutting and application of treatments was never longer than 1-2 hours and the cuttings planted just after application of the root-forming substances. Hard cuttings were planted in well rinsed river sand in the open, inclined at angle and covered with cheesecloth. Leafy cuttings were planted vertically in a rooting medium covered with a crystal, placed in a room at 19-21°C; extra illumination was supplied with white fluorescent lamps. All cuttings were daily sprayed with water several times a day. No was employed in the rooting media hot bottom. Neither hard and soft cuttings gave positive results. Hard ones sprouted and grew shoots especially those treated with micronutrients; some shoots put out 3-8 well developed leaves during the period of 3-4 months; but no roots developed. Cold treatment appeared to be harmful, the cuttings developed buds only slightly. For soft cuttings, the 3rd test gave the best results, the cuttings living longer than in the other treatments, they callused well at the upper end but formed no roots. The only slight response to hormone treatment was found in cuttings with an apical bud, in which growth had ceased, when treated with a proprietary dust (α-naphthalencacetic acid) and sprayed daily with Knop´s modified solution, they developed but finally produced no roots. It would be desirable to set up further experiments using stronger concentrations of rooting forming substances, alone or in mixtures. In no case did the cuttings show any signs of injury through overdose. A higher degree of control of the external factors influencing root-formation would be very useful.
[ES] Al objeto de reproducir vegetativamente híbridos de castaño (Castanea sativa x C. crenata) resistentes a ciertas enfermedades micológicas, se realizaron experiencias con estacas duras y estacas foliosas. Con las primeras se llevaron a cabo las siguientes pruebas: 1.º Tratamiento con ácido β-indolacético, ácido α-naftalenacético, ácído indolpropiónico, ácido 2,4,5 triclorofenoxiacétíco y naftoxiacetato sódico en concentraciones de 200, 125, 8O, 40 y 20 p.p.m., respectivamente, durante veinticuatro horas con luz roja y a 17-20ºC. 2.º Tratamiento durante quince horas con soluciones al 0,001 por 1.000 de sulfato de cobre, sulfato de cinc, sulfato de manganeso, cloruro de cobalto y ácido bórico, seguido de tratamiento durante dos horas, respectivamente con 80, 40 y 20 p.p.m. de ácido α-naftlenacétíco aplicadas en luz roja a 19-21ºC. 3.º Tratamiento a 0ºC, durante veintisiete días y después 50 p.p.m. de heteroauxina y un preparado comercial en polvo conteniendo ácido α-naftalenacético. Con las estacas provistas de hojas se hícieron las siguentes pruebas: 1.º Se toman estacas antes que la planta madre entre en floración y se tratan con 100 y 50 p.p.m. de heteroauxina y ácido α-naftalenacético durante 24 horas en oscuridad y a 19ºC ó con un preparado comercial en polvo. 2.º Se toman las estacas durante el comienzo de la fructificación de la planta madre y se tratan con 3.000 p.p.m. de ácido α-naftalenacético durante un minuto seguido de lavado en agua y con dos preparados comerciales en polvo. 3.º Se toman estacas cuando la planta madre tiene los frutos bien desarrollados y se prueba la influencia de su pulverización diaria con solución de Knop a la que se adicionó, por cada litro, 50 mgs. de asparraguina, 50 mgs. de d. 1. α alanina, 2,5 g de sulfato de cinc y 80 g de sacarosa. Todas las estacas fueron tratadas con un preparado comercial en polvo conteniendo ácido α-naftalenacético. Los preparados comerciales en polvo eran recomendados para enraizamiento de castaño. Las estacas fueron tomadas y tratadas con todo cuidado, no transcurriendo más de una-dos horas desde que fueron cortadas y se les aplicó el tratamiento correspondiente, siendo plantadas a continuación. Las estacas duras fueron plantadas inclinadas en arena de río lavada, al aire libre, protegiéndolas con sacos húmedos. Las estacas blandas se plantaron en arena de río lavada o en musgo de Sphagnum sp. vivo, en habitación a 19-20º C. extrailuminada con luz fluorescente blanca. Todas las estacas fueron pulverizadas varias veces al día, no empleándose calefacción en el fondo de las cámaras de enraizamiento. Prácticamente ni las estacas duras ni las foliosas dieron resultados positivos. Todas las estacas duras brotaron y algunas especialmente las tratadas con microelementos, formaron ramas con tres-ocho hojas bien desarrolladas, viviendo durante tres-cuatro meses, peo no llegaron a formar raíces. El tratamiento con frío fue notoriamente perjudicial. Las estacas foliosas de la prueba vivieron más tiempo, formaron callo superior, pero tampoco fueron capaces de originar raíces. Con la sola excepción de unas estacas foliosas con yema terminal, pero no en crecimiento activo, pulverizadas con la solución Knop modificada y tratada con ácido α-naftalenacético (mezclado con talco) que respondieron con el típico hinchamiento basal producido por las fitohormonas, los demás tratamientos no produjeron ni la menor respuesta perceptible. La impresión es que conviene aplicar dosis más elevadas de fitohormonas y llevar un control más riguroso de los factores externos que gobiernan la formación de raíces.
URIhttp://hdl.handle.net/10261/61620
ISSN0365-1835
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